一、基本原理
细胞凋亡检测早期改变发生在细胞膜表面，目前早期识别仍有困难。这些细胞膜表面的改变之一是磷脂酰*（ps）从细胞膜内转移到细胞膜外，使ps暴露在细胞膜外表面。ps是一种带负电荷的磷脂，正常主要存在于细胞膜的内面，在细胞发生凋亡时细胞膜上的这种磷脂分布的不对称性被破坏而使ps暴露在细胞膜外。annexin v是一种ca+依赖的磷脂结合蛋白，初发现是一种具有很强的抗凝血特性的血管蛋白，annexin v具有易于结合到磷脂类如ps的特性。对ps有高度的亲和性。因此，该蛋白可充当一敏感的探针检测暴露在细胞膜表面的ps。ps转移到细胞膜外不是凋亡所*的，也可发生在细胞坏死中。两种细胞死亡方式间的差别是在凋亡的初始阶段细胞膜是完好的，而细胞坏死在其早期阶段细胞膜的完整性就破坏了。因此，可以建立一种用annexin v结合在细胞膜表面作为凋亡的指示并结合一种染料排除试验以检测细胞膜的完整性的检测方法。
二、试剂与仪器
1、孵育缓冲液：10mmol/l hepes/naoh，ph 7.4，140mmol/l nacl，5mmol/l cacl2
2、标记液：将fitc- annexin v（宝灵曼公司产品）和pi加入到孵育缓冲液中，终浓度均为1ug/ml
3、流式细胞仪
三、实验步骤
1、细胞收集：悬浮细胞直接收集到10ml的离心管中，每样本细胞数为（1~5）×106，/ml 500~1000r/min离心5min，弃去培养液。
2、用孵育缓冲液洗涤1次，500~1000r/min离心5min。
3、用100ul的标记溶液重悬细胞，室温下避光孵育10~15min。
4、500~1000r/min离心5min沉淀细胞孵育缓冲液洗1次。
5、加入荧光（sa-flous）溶液4℃下孵育20min，避光并不时振动。
6、流式细胞仪分析：流式细胞仪激发光波长用488nm，用一波长为515nm的通带滤器检测fitc荧光，另一波长大于560nm的滤器检测pi。
7、结果判断：凋亡细胞对所有用于细胞活性鉴定的染料如pi有抗染性，坏死细胞则不能。细胞膜有损伤的细胞的dna可被pi着染产生红色荧光，而细胞膜保持完好的细胞则不会有红色荧光产生。因此，在细胞凋亡检测的早期pi不会着染而没有红色荧光信号。正常活细胞与此相似。在双变量流式细胞仪的散点图上，左下象限显示活细胞，为（fitc-/pi-）；右上象限是非活细胞，即坏死细胞，为（fitc+/pi+）；而右下象限为凋亡细胞，显现（fitc+/pi-）。
hplc法含量测定 100mg 100574-200401 *
含量测定 100mg 100575-200903 *钠
含量测定 50mg 100578-200401 异烟肼
含量测定 100mg 100580-200501 *
含量测定 100mg 100581-200501 *
uv法含量测定 50mg 100583-200401 *
hplc法含量测定 100mg 100584-200401 *
含量测定 100mg 100585- 201003 *
含量测定 100mg 100586-200401 *
检查用 50mg 100587-200901 双硫化物
细胞凋亡检测