细胞分选常见问题
问题一
为什么建议磁珠分选而不是流式分选?
1)磁珠分选需要的设备简单,而流式分选需要配备分选型流式细胞仪,价格较为昂贵,而且流式分选对于操作员的技术要求很高,需要专门的培训并有一定的经验后才能很好地完成流式分选;
2)磁珠分选所需要的时间远小于流式分选所需要的时间;
3)磁珠分选对于目的细胞的刺激比流式分选要小,流式分选过程中需要对目的细胞所在的液滴通电,并且需要经过一个强电场的区域,对目的细胞的刺激相对较大;磁珠分选只是让细胞处于一个低磁场中,基本可以忽略对细胞的影响,从保持细胞活力的方面考虑,磁珠分选要优于流式分选。
因此,如果磁珠分选可以满足实验需求时,应尽量选择磁珠分选的方法。
问题二
磁珠分选为什么要求细胞活性越高越好?
1)死细胞分泌dna,dna有粘性,会将磁珠标记细胞和非标记细胞粘在一起,如果是阳选会影响纯度,如果是阴选会影响得率。
2)细胞活性低时可能会影响抗原抗体的结合效率。
问题三
磁珠分选buffer是什么?
automacs running buffer(自己配制:ph7.2 pbs,0.5%bsa、2mm edta,如需无菌,建议购买商品化buffer或紫外线照射,不建议高温高压灭菌)。
问题四
如果想分选的细胞有多个阳性marker怎么办?
可以选择磁珠分选阴选+阳选的方法,eg.分选小鼠脾脏naive cd4+t可以先用阴选的方法分到cd4+t细胞再用cd62l磁珠阳性分选;也可以用磁珠+流式的方法。
问题五
分选柱可以二次使用吗?
不建议,主要是分选柱内填充的铁珠在使用后易生锈。
问题六
分选柱应如何选择?
不同的试剂盒对于ms/ls/ld柱的最大细胞上样量和最大磁性细胞吸附量是不同的,建议一定要参考说明书;
此外,如分选的目的细胞较大(eg.巨核细胞或fibroblast),可考虑采用large cell colums。
磁珠分选-方案a:magnisort™阳性分选
引言
下述方案是magnisort™阳性分选试剂盒的通用操作指南。具体请参见试剂盒内的说明书。在阳性分选中,待分选的细胞首先与标记的抗体结合,然后被链酶亲合素包被的磁珠捕获。将细胞放入magnisort™磁座后,阳性细胞被磁场吸住,而阴性细胞仍游离在溶液中,可被弃掉。每个试剂盒中的化抗体和磁珠预先已滴定好最适浓度,为即用型试剂。
注意事项
注:magnisort™5ml磁座可产生强磁场。应远离心脏起搏器、、磁性身份卡、手表、计算机显示器、硬盘等物品,以免损坏。
细胞制备
1.在未特别说明的情况下,magnisort™阳性分选试剂盒已优化,适用于小鼠二级淋巴组织或正常人pbmc。
2.用于小鼠细胞时,建议用40μm的尼龙细胞筛清除碎屑,以使试剂盒发挥出最佳效果。
3.正常人pbmc的制备,参见“细胞制备-方案d:从全血中提取pbmc”(第28页)。为使magnisort™试剂盒发挥最佳性能,建议洗涤白膜层,去除血小板。
4.向缓冲液中加入edta减少细胞聚集。
后续用于无菌培养
1. magnisort™阳性分选抗体和阳性分选磁珠中含有少量作为防腐剂。当使用不含的无菌缓冲液时,它不会影响细胞功能。需要根据测试判断在特定实验中的性能。
2.分选无菌细胞时应该在超净工作台中进行,并使用带盖的聚苯乙烯无菌试管和无菌缓冲液。
提供的材料
ƒmagnisort™阳性分选抗体,200次试验,20μl/次试验。2-8°c贮存。
ƒmagnisort™阳性分选磁珠,4ml。2-8°c贮存。
所需其他材料
ƒ细胞分选推荐使用的缓冲液:添加3%胎牛血清(fbs)和10mmedta的pbs或hank(hbss)。2-8°c贮存。
ƒmagnisort™磁座,5ml。
ƒ12 x 75 mm流式管(5 ml,bd falcon™,货号352008或类似产品)。
ƒ15ml离心管(bd falcon™,货号352099或类似产品)
实验步骤
1.用适当的细胞分离液,制备浓度为1x107细胞/100μl(1 x 108/ml)的淋巴细胞悬液。
注:细胞必须制成单细胞悬液。实验前需要检查样本,必要时用涡旋法或移液器去除细胞团块。
2.将所需数量的细胞(不能超过2 x 108个细胞)放入12 x 75 mm的5ml试管中。
3.每100μl细胞中加入20μlmagnisort™阳性分选抗体。涡旋5次混匀。室温孵育10分钟。
4.加入细胞分离液洗涤细胞,使其总体积达到4ml,在300xg下离心5分钟。
5.弃上清,然后用细胞分离液重悬细胞至最初的体积。
注:细胞必须制成单细胞悬液,实验前需要检查样本,必要时用涡旋或移液器去除细胞团块。
6.每100μl细胞中加入20μlmagnisort™阳性分选磁珠。涡旋5次混匀。室温孵育10分钟。
注:为确保最佳性能,将magnisort™阳性分选磁珠加入细胞之前必须充分混匀。将设定为1ml的pipetman™p1000移液器上下吹打5次,或者采用涡旋的方式重悬磁珠。7.用细胞分离液将体积加至2.5ml。将设定为1ml的pipetman™p1000移液器上下吹打3次,使其混匀。不能涡旋。
8.将试管插入磁座中间的孔底,室温孵育5分钟。
9.拿起磁座将试管内的上清液倒入废液容器内;这些是不需要(未结合)的细胞。将试管倒置1秒钟,然后回正。注:切勿吸干或摇晃倒置后的试管,否则会降低回收率。如果需要也可以收集起结合细胞。
10.从磁座中取出试管并重复7-9步两次,总共洗涤细胞3次。
11.从磁座中取出含目标细胞的试管,加入1ml细胞分离液。沿着试管侧壁加入缓冲液,洗涤试管侧壁。此时,试管内就是分选的阳性细胞,备用。
磁珠分选-方案b:magnisort™阴性分选
简介
以下是magnisort™阴选试剂盒的通用操作指南,该试剂盒适用于细胞进行阴性分选。具体请参见每个试剂盒内的说明书。在阴性分选中,不需要的细胞与bition化抗体混合液结合,然后加入链霉亲和素包被的磁珠。将细胞放入magnisort™磁座后,不需要的细胞被磁场吸住,而需要的细胞游离在溶液中,将其倒出后即可使用。每个试剂盒中的ition化抗体和磁珠已预先滴定好最适浓度,为即用型试剂。
注意事项
注意:magnisort™5ml磁座可产生强磁场。应远离心脏起搏器磁性身份卡、手表、计算机显示器、硬盘等物品,以免损坏。
细胞制备
1.在未特别指明的情况下,magnisort™阴选试剂盒已经过优化,专门适用于小鼠二级淋巴组织或正常人pbmc。
2.用于小鼠细胞时,建议用40μm的尼龙细胞筛清除碎屑,以使试剂盒发挥出最佳效果。
3.正常人pbmc的制备,参见“细胞制备-方案d:从全血中提取pbmc”(第28页)。为使magnisort™试剂盒发挥最佳性能,建议洗涤白膜层,去除血小板。
4.缓冲液中加入edta减少细胞聚集。
后续用于无菌培养
1. magnisort™阴选抗体混合液和阴性分选磁珠中含有少量作为防腐剂。当使用不含的无菌缓冲液时,它不会影响细胞功能。需要根据测试判断在特定实验中的性能。
2.分选无菌细胞时应该在超净工作台中进行,并使用带盖的聚苯乙烯无菌试管和无菌缓冲液。
提供的材料
ƒmagnisort™阴选抗体混合液,200次实验,20μl/次试验。2-8°c贮存。
ƒmagnisort™阴性分选磁珠,4ml。2-8°c贮存。
所需其他材料
ƒ细胞分选推荐使用的缓冲液:pbs或添加3%fbs和10mmedta的hbss。2-8°c贮存。
ƒmagnisort™磁座,5ml
ƒ12 x 75 mm流式管(5 ml, bd falcon™,货号352008或类似产品)
实验步骤
1.用适当的细胞分离液,制备浓度为1x107细胞/100μl(1 x 108/ml)的单细胞悬液。
注:细胞必须制成单细胞悬液。实验前需要检查样本,必要时用涡旋法或移液器去除细胞团块。
2.将所需数量的细胞(不能超过2 x 108个细胞)放入12 x 75 mm的5ml试管中。
3.每100μl细胞中加入20μlmagnisort™阴选抗体混合液。涡旋5次混匀。室温孵育10分钟。
4.用细胞分离液洗涤细胞,使其总体积达到4ml,300xg离心5分钟。
5.弃上清,然后用细胞分离液重悬细胞至最初的体积。
注:细胞必须制成单细胞悬液。实验前需要检查样本,必要时用涡旋法或移液器去除细胞团块。
6.向每100μl细胞中加入20μl magnisort™阴性分选磁珠。涡旋5次混匀。室温孵育5分钟。
注:为确保最佳性能,将magnisort™阴性分选磁珠加入细胞之前必须充分混匀。将设定为1ml的pipetman™p1000移液器上下吹打5次,重悬磁珠,不能涡旋。
7.用细胞分离液将体积加至2.5ml。将设定为1ml的pipetman™p1000移液器上下吹打3次,使其混匀。不能涡旋。
8.将试管插入磁座中间的孔底,室温孵育5分钟。
9.拿起磁座以连续的动作将试管内的上清液倒入一支新的12x75mm 5ml试管中并将磁座内的试管倒置1秒钟,然后回正。
注:切勿吸干或摇晃倒置后的试管,否则会降低未结合细胞的纯度。
10.将磁座中的试管丢弃。
11.此时,新5ml 12 x 75 mm试管中的阴性细胞即为分选后的目的细胞,备用。
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货号
品名
规格
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关键词:流式细胞仪 显示器 防腐剂 超净工作台 移液器